关键词:
脊髓损伤
NEP1-40
神经干细胞
慢病毒载体
透明质酸水凝胶生物支架
摘要:
目的1.构建NEP1-40基因慢病毒载体修饰神经干细胞(Neural stem cell,NSC),验证其增殖分化潜能以及对背根神经节(Dorsal root ganglion,DRG)细胞轴突生长的调节作用;2.通过检测Rho/ROCK信号通路关键调控蛋白的表达,明确NEP1-40-NSC促进轴突再生的机制;3.通过3D打印技术构建透明质酸(Hyaluronic acid,HA)水凝胶支架,检测其物理性能、细胞负载潜能以及对NEP1-40-NSC分泌能力的影响,探究NEP1-40-NSC联合HA支架促进轴突再生的可能,为SCI修复和轴突再生的基础研究提供新的思路。
方法***1-40基因慢病毒载体的构建:从基因库检索大鼠NEP1-40基因序列,通过PCR对基因序列进行扩增;连接目的基因与线性化酶切载体后转化DH5α感受态细胞;测序验证结果为阳性的克隆菌落;将构建好携带目的基因的质粒与两种病毒包装辅助质粒共转染293T细胞;收集含慢病毒颗粒的细胞上清液并进行纯化浓缩,测定病毒滴度后-80℃分装保存。***的培养、分化及鉴定:从E18天SD大鼠(孕)的胎鼠大脑皮质分离原代NSC进行培养,稳定培养后行CCK8增殖检测和Nestin免疫荧光染色鉴定;诱导分化后,行β-TublinⅢ、GFAP及MBP免疫荧光染色鉴定其分化潜能。***1-40基因慢病毒转染NSC分化及表达检测:设置NSC组、空载病毒(aSV-NSC)组和NEP1-40慢病毒(NEP1-40-NSC)组,按最适MOI值进行NSC转染,通过CCK8法检测细胞增殖情况,转染72h后进行Nestin荧光鉴定。诱导分化3、5、7天细胞行免疫荧光检测,分别计算β-tubulinⅢ、GFAP、MBP阳性细胞所占的比例,研究细胞分化情况;通过RT-PCR、Western blot、Elisa等方法分别检测NEP1-40在转录、翻译水平及细胞外的表达情况。***1-40-NSC与DRG细胞共培养:从SD大鼠(孕)的胎鼠脊髓旁分离DRG细胞培养后,采用Nogo-A干预。设置Control组、NSC组和NEP1-40-NSC组。共培养5天后行NeuN、Phalloidine和Tuj-1免疫荧光染色观察神经元的生长锥和丝状伪足结构,Western Blot检测体外轴突再生蛋白标记物GAP-43、MAP-2、APP的表达以及NgR信号通路关键调控蛋白Rho、ROCK、LIMK、Cofilin以及MLCⅡ的蛋白和磷酸化水平。5.3D打印透明质酸水凝胶支架构建:将制备好的透明质酸水凝胶材料分装入低温料筒,加入光敏剂混匀后排气泡采用3D打印技术制成横纵交联孔状结构的HA水凝胶支架,通过测定孔隙率、吸水率以及降解实验检测支架的生物-物理学特性。***1-40-NSC与支架材料共培养研究:将HA水凝胶支架置于48孔板接种NEP1-40-NSC,进行扫描电镜观察NSC在HA支架上的附着情况。设置NSC组、NEP1-40-NSC组、NEP1-40-NSC-HA组,采用CCK8法检测细胞在支架上的增殖情况,以及ELISA检测共培养体系上清液中NEP1-4的含量。
结果1.成功构建NEP1-40基因慢病毒载体,测序结果显示载体NEP1-40序列与预知序列完全一致。***大鼠原代NSC聚集生长呈球状,Nestin、β-tubulinⅢ、MBP、GFAP免疫荧光鉴定神经球为NSC,并且具有分化成不同细胞的能力;***1-40基因慢病毒转染NSC后,通过免疫荧光检测确定MOI值为10时荧光强度以及转染率最高,并且细胞活力不受影响;各个水平检测NEP1-40表达量均高于未转染组,差异具有统计学意义(P<0.05)。连续培养3、5、7天后在荧光结果显示NEP1-40慢病毒组神经元和少突胶质细胞数量逐渐增多,而星形胶质细胞逐渐减少。***1-40-NSC与DRG细胞共培养后,免疫荧光染色显示NEP1-40-NSC组DRG细胞神经元、轴突、生长锥和伪足数量增多并且长度延长,Western Blot结果显示NEP1-40-NSC组轴突再生标记蛋白GAP-43、MAP-2表达量显著高于其他组,而APP蛋白则相反(P<0.05)。NgR信号通路关键调控蛋白Rho、ROCK表达显著下降,并且LIMK、Cofilin以及MLCⅡ的磷酸化水平显著低于其他组(P<0.05)。5.成功制备HA水凝胶生物材料,通过3D打印技术成功构建HA水凝胶支架,吸水率、孔隙率以及降解实验结果显示HA支架具备一定的物理特性和生物降解性。***1-40-NSC组与HA水凝胶支架共培养,CCK8结果显示复合支架组细胞生长良好,支架无细胞毒性作用;扫描电镜显示NSC附着于HA支架上并且存活,Elisa检测共培养体系上清液NE